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        NAD~+依賴酶CD38和NAD在氧化損傷和抗氧化中的研究
         
             論文目錄
         
        摘要第5-7頁
        ABSTRACT第7-8頁
        第一章 緒論第15-27頁
            1.1 NAD第15-16頁
                1.1.1 NAD簡介第15-16頁
                1.1.2 NAD在組織損傷中的保護作用第16頁
            1.2 同步輻射X射線第16-18頁
                1.2.1 同步輻射X射線簡介第16-17頁
                1.2.2 氧化應激在同步輻射X射線誘導的損傷中的作用第17-18頁
            1.3 CD38第18-21頁
                1.3.1 CD38的結構第19-20頁
                1.3.2 CD38在組織損傷中的作用第20-21頁
            1.4 Nrf2/ARE抗氧化通路第21-24頁
                1.4.1 Nrf2-ARE通路第21-23頁
                1.4.2 谷胱甘肽第23-24頁
            1.5 SIRT2第24-26頁
                1.5.1 sirtuin第24-25頁
                1.5.2 SIRT2在氧化應激中的作用第25-26頁
            1.6 課題的確立與研究目標第26-27頁
        第二章 同步輻射X射線通過氧化應激影響NAD~+依賴酶CD38第27-41頁
            2.1 引言第27頁
            2.2 實驗材料與方法第27-34頁
                2.2.1 主要試劑和儀器第27-30頁
                2.2.2 大鼠性腺同步輻射X射線照射第30頁
                2.2.3 Wester blot第30-31頁
                2.2.4 免疫熒光染色第31頁
                2.2.5 Realtime PCR第31-33頁
                2.2.6 數據分析第33-34頁
            2.3 實驗結果第34-39頁
                2.3.1 不同劑量的同步輻射X射線增加雄性大鼠性腺CD38水平第34-35頁
                2.3.2 不同能量的同步輻射X射線增加雄性大鼠性腺CD38水平第35-36頁
                2.3.3 氧化應激參與同步輻射X射線誘導的CD38增加第36-37頁
                2.3.4 同步輻射X射線不影響CD38 mRNA水平第37-38頁
                2.3.5 PARP不參與同步輻射X射線誘導的CD38增加第38-39頁
            2.4 小結與討論第39-41頁
        第三章 NADH通過Nrf2通路調控谷胱甘肽水平第41-59頁
            3.1 引言第41頁
            3.2 材料和方法第41-45頁
                3.2.1 主要試劑和儀器第41頁
                3.2.2 細胞培養第41-42頁
                3.2.3 全細胞蛋白提取第42頁
                3.2.4 細胞核蛋白和細胞漿蛋白的提取第42-43頁
                3.2.5 Western Blot第43頁
                3.2.6 RNA提取和realtime PCR第43頁
                3.2.7 GSH and GSSG assay第43-44頁
                3.2.8 NAD+檢測第44頁
                3.2.9 Catalase活力檢測第44-45頁
                3.2.10 細胞超氧化物陰離子水平檢測第45頁
                3.2.11 數據分析第45頁
            3.3 實驗結果第45-56頁
                3.3.1 NADH處理能夠增加細胞內谷胱甘肽水平第45-47頁
                3.3.2 NADH能夠恢復魚藤酮降低的分化的PC12細胞內的谷胱甘肽水平第47-48頁
                3.3.3 NADH能夠增加原代星形膠質細胞內的谷胱甘肽第48-49頁
                3.3.4 NADH處理能夠增加分化的PC12細胞內GCLc和GCLm的水平第49-51頁
                3.3.5 NADH處理能夠增加分化的PC12細胞內Nrf2 m RNA和細胞核Nrf2的水平第51-53頁
                3.3.6 NAD+在NADH上調Nrf2通路中的作用第53-54頁
                3.3.7 氧化應激在NADH上調的Nrf2通路中的作用第54-56頁
            3.4 小結與討論第56-59頁
        第四章 SIRT1/2 以及Akt、ERK1/2 在NADH誘導的谷胱甘肽增加中的作用第59-83頁
            4.1 引言第59-60頁
            4.2 材料和方法第60-61頁
                4.2.1 主要試劑和儀器第60頁
                4.2.2 細胞培養第60頁
                4.2.3 siRNA干擾(RNA interference,RNAi)第60-61頁
                4.2.4 全細胞蛋白提取第61頁
                4.2.5 細胞核蛋白和細胞漿蛋白的提取第61頁
                4.2.6 Western Blot第61頁
                4.2.7 RNA提取和realtime PCR第61頁
                4.2.8 GSH and GSSG assay第61頁
                4.2.9 數據分析第61頁
            4.3 實驗結果第61-80頁
                4.3.1 SIRT1抑制對NADH誘導的細胞內谷胱甘肽水平增加沒有影響第61-62頁
                4.3.2 SIRT2抑制和SIRT2 siRNA基因沉默都能夠降低NADH增加的細胞內谷胱甘肽水平第62-65頁
                4.3.3 SIRT2 siRNA基因沉默降低NADH增加的GCL mRNA第65-66頁
                4.3.4 SIRT2 siRNA基因沉默和AGK2能夠降低NADH增加的GCL蛋白質水平第66-68頁
                4.3.5 SIRT2 siRNA或者AGK2降低NADH增加的全細胞Nrf2 mRNA和蛋白質第68-69頁
                4.3.6 SIRT2 siRNA和AGK2降低NADH增加的細胞核Nrf2水平第69-72頁
                4.3.7 NADH不影響SIRT2的表達第72-73頁
                4.3.8 ERK磷酸化水平不受NADH的影響第73-75頁
                4.3.9 Akt磷酸化水平受到NADH和SIRT2的調控第75-76頁
                4.3.10 LY294002降低NADH增加的谷胱甘肽和細胞核Nrf2第76-78頁
                4.3.11 NADH通過SIRT2調控分化的PC12細胞內catalase活力第78-80頁
            4.4 小結與討論第80-83頁
        總結與展望第83-85頁
        參考文獻第85-102頁
        致謝第102-103頁
        攻讀學位期間發表的學術論文第103頁

         
         
        論文編號BS4380667,這篇論文共103
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